<!DOCTYPE HTML PUBLIC "-//W3C//DTD HTML 4.0 TRANSITIONAL//EN">
<HTML>
<HEAD>
  <META HTTP-EQUIV="Content-Type" CONTENT="text/html; CHARSET=UTF-8">
  <META NAME="GENERATOR" CONTENT="GtkHTML/3.24.1.1">
</HEAD>
<BODY TEXT="#000000" BGCOLOR="#ffffff">
Hi Javier<BR>
1.- you are right! the diff_mol.xvg file I reported was from a previous attempt in which I used the whole lipid molecules with the -mol option on, instead of the PO4 beads with -mol off. Sorry for this confusion<BR>
<BR>
2.- As I said above, I did attempts using both the whole molecule and the PO4 beads. Yes I saw the figure 6 in the Wolhert &amp;Edholm's paper but I read in several other references that the calculation is more accurate by using only the P atom... what makes sense to me mainly for the lipids which are in contact with proteins<BR>
<BR>
3.- I agree that removing jumps does not change anything. I decided to give this information in my message to avoid a reply saying &quot;try to remove jumps&quot; ;)<BR>
<BR>
4.- Yes I agree that I could do the calculation by creating an index for each lipid... I guess that is the safest way to proceed... <BR>
<BR>
Thanks for your reply!<BR>
<BR>
&#193;ngel.<BR>
<BR>
<BR>
<BR>
On Thu, 2010-12-02 at 13:30 +0100, Javier Cerezo wrote:<BR>
<BLOCKQUOTE TYPE=CITE>
    Hello &#193;ngel.<BR>
    <BR>
    Well, there are a some things that I don't understand about your calculation, but might be just a problem of mine. Here you have my comments:<BR>
    <BR>
    1. How do you get the diff_mol.xvg file if you are not using -mol in your command line input (and you index file has broken molecules).<BR>
    <BR>
    2. Why do you select just an atom to calculate the diffusion? According to Wolhert and Edholm (JCP, 125, 204703) the MSD for all lipids atoms reach the same slope, so I guess using them all could improve sampling (I'm not sure).<BR>
    <BR>
    3. I think that reprocessing of your trajectory to remove jumps is no longer needed (I got the same results in a recent test using version 4.5.1).<BR>
    <BR>
    4. What I would do to calculate D as funtion to the distance to the membrane protein is generate different index files containing lipids according to this distance (and hoping they don't move a lot during the simulation) and run different msd calculations. I think I have read in the mailing list about a script to make such a selection regarding distances to construct the index file or just make your own one.<BR>
    <BR>
    Good luck<BR>
    <BR>
    Javier&nbsp; <BR>
    <BR>
    El 02/12/10 12:50, &#193;ngel Pi&#241;eiro escribi&#243;: <BR>
    <BLOCKQUOTE TYPE=CITE>
        I want to add that the MSD as a function of time (msd.xvg file) looks completely linear<BR>
        <BR>
        Greetings,<BR>
        <BR>
        &#193;ngel Pi&#241;eiro.<BR>
        <BR>
        On Thu, 2010-12-02 at 12:45 +0100, &#193;ngel Pi&#241;eiro wrote:<BR>
        <BLOCKQUOTE TYPE=CITE>
            Dear all,<BR>
            I aim to calculate the lateral diffusion coefficients of lipids as a function of the distance to a membrane protein using the Martini force field. For this I guess I could use the diff_mol.xvg output file of the g_msd command which provides the list of diffusion coefficients for each lipid (I guess the lipids are ordered as in the trajectory file). Then I would calculate the protein-lipid distance for each lipid and I would generate the diffusion vs distance file. Before starting the calculations on the membrane protein system I tested the g_msd command on a DPPC bilayer. In my bilayer simulation I removed the COM of lipids and water separately. Before analyzing it I removed jumps over the box boundaries using trjconv -pbc nojump and I created a index file with the PO4 atoms as a new group. Then I executed the following command:<BR>
            <BR>
            g_msd -s topol.tpr -f trajnojump.xtc -n p.ndx -lateral z -rmcomm<BR>
            <BR>
            from which I get the following output:<BR>
            D[&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; PO4] 0.0958 (+/- 0.0135) 1e-5 cm^2/s<BR>
            <BR>
            I think the value is not crazy for DPPC at 323 K using Martini... but I noticed that the D values for the independent lipids reported in the diff_mol.xvg file range from 0.0021959 to 0.482909 cm^2/s. If the differences are so high for a single lipid bilayer I suspect that I will not observe significant differences as a function of the distance to the protein in my simulations of the whole system... probably I am doing something wrong&#191;?<BR>
            <BR>
            Thanks for any advice<BR>
            <BR>
            &#193;ngel Pi&#241;eiro.<BR>
            <BR>
        </BLOCKQUOTE>
    </BLOCKQUOTE>
    <BR>
    -- <BR>
    Javier CEREZO BASTIDA<BR>
    Estudiante de Doctorado<BR>
    ---------------------<BR>
    Dpto. Qu&#237;mica-F&#237;sica<BR>
    Universidad de Murcia<BR>
    30100 MURCIA (Espa&#241;a)<BR>
    Tlf.(+34)868887434<BR>
    -- <BR>
    gmx-users mailing list    <A HREF="mailto:gmx-users@gromacs.org">gmx-users@gromacs.org</A><BR>
    <A HREF="http://lists.gromacs.org/mailman/listinfo/gmx-users">http://lists.gromacs.org/mailman/listinfo/gmx-users</A><BR>
    Please search the archive at <A HREF="http://www.gromacs.org/Support/Mailing_Lists/Search">http://www.gromacs.org/Support/Mailing_Lists/Search</A> before posting!<BR>
    Please don't post (un)subscribe requests to the list. Use the <BR>
    www interface or send it to <A HREF="mailto:gmx-users-request@gromacs.org">gmx-users-request@gromacs.org</A>.<BR>
    Can't post? Read <A HREF="http://www.gromacs.org/Support/Mailing_Lists">http://www.gromacs.org/Support/Mailing_Lists</A>
</BLOCKQUOTE>
</BODY>
</HTML>